酶联免疫吸附试验(ELISA)是目前临床实验室检测免疫学指标*受欢迎、应用范围*广泛的方法，具有灵敏度高、特异性强、快速简便、重复性好、成本低、环保且适合大批量人群筛查等优点，虽然操作简单，但是一些影响因素不容小觑，临床待检标本常受溶血、黄疸、脂浊、类风湿因子、高浓度非特异性免疫球蛋白、药物、血液抗凝剂及细菌污染等因素的影响，导致检测结果判断错误，本文就ELISA 法检测的影响因素及相应对策做一综述，提高检测的准确性。
酶联免疫吸附法(enzyme linked immunosorbentassay，ELISA)是一种特殊的试剂分析方法，在免疫酶技术的基础上发展起来的一种新型的免疫测定技术，其试剂易于保存、结果判断较为客观，是目前实验室检测抗原抗体*经济、*普遍的试验诊断方法。其原理是将抗原(抗体)结合到固相载体表面，再将待测抗体(抗原)、酶标抗原(抗体)与固相抗原(抗体)结合形成免疫复合物，经洗涤使免疫复合物与待测抗体(抗原)呈比例，加入酶反应底物使其与固相上的酶反应变色， 根据颜色做定性或定量分析，得出检测结果。ELISA 法步骤包括标本的采集、保存、加样、温育、洗板、显色、比色以及结果判断，临床采集待检样本过程中常出现溶血、黄疸、脂浊，类风湿因子、高浓度非特异性免疫球蛋白、药物及血液抗凝剂等亦对结果产生一定影响。虽然操作简单，但还是需要注意一些因素的影响，试剂的选择、正确的操作、优良的仪器都与检测结果密切相关。本文根据样本的影响因素及操作流程中可能出现的相关问题展开笔述， 对ELISA 法检测的影响因素及相应对策作一综述，希望提高ELISA 法检测的准确性。
1 样本的影响因素
临床采取空腹抽取静脉血清作为ELISA 检测标本，标本采集过程中很多因素可能导致检测结果不准确，如溶血、脂浊、类风湿因子、甲胎蛋白、高浓度非特异性免疫球蛋白、药物、血液抗凝剂及细菌污染等。
2 操作的影响因素
2.1 试剂的准备试剂的质量如抗原抗体的纯度及亲和力、标记物的比活性、滴度及特异性等直接影响检测结果，不同厂家试剂敏感性、特异性不尽相同， 对ELISA 试剂盒应正确选择，定期评价并建立科学的接收标准，结合常规血液筛查情况，对实际的均一性、适用性、稳定性，选出灵敏度、特异度及精密性合适的试剂保证检测结果的准确。其次试剂盒的储存方式、运输条件及有效期均为影响检测结果的重要因素， 试剂盒一般2~8℃冰箱保存， 注意不要紧贴冰箱储存室后壁以防止试剂冻结失效， 可避免使用时试剂受温差影响导致酶标板上凝集小水珠及反应出现温差而影响抗原抗体的反应。使用前需将试剂盒放置37℃恒温箱温育30min，且不同厂家、不同批号的试剂不能混合使用。剩余试剂应及时放入干燥剂密封保存在2~8℃冰箱，试剂打开后一周内有效，同时注意做好室内质检，确保实验结果的可靠性。
2.2 样本的采集、保存及预处理标本的运输及保存、检测人员的自身素质均可能对检测结果造成不良影响，为避免出现错误样品应准确标明编号、种类、受检者姓名及采集时间，收集后认真核对，拒收不符合要求的标本及申请单， 严格按照拒收制度处理，同时处理合格标本，做好后续工作，避免延误导致标本出现溶血等其它不良情况。标本的预处理对检测结果有非常明显的影响。标本离心需彻底且必须待血液凝固后方能分离血清， 也可在标本采集时使用带分离胶的采血管提取，使用未混入保存液的血液做检测标本。在此过程中保证待检标本新鲜、避免细菌污染，否则易出现假阳性结果，若不能及时检测可将分离的血清于4℃保存， 超过一周于-20℃保存，避免反复冻融，防止出现假阴性结果。若血清中含有类风湿因子或免疫复合物也将造成假阳性结果。
2.3 加样ELISA 检测加样时应垂直将样本准确加入微孔底部， 注意避免吸头碰到酶标板上的包
被物，尽量慢吸快放，防止溅出或产生气泡，避免液体外溅使血清残留在反应壁上。每次吸样注意更换吸头，做到一样一吸头，避免交叉污染，干吸头每次加样前在血清中抽吸三次保证吸样准确，滴加试剂时建议先将滴瓶摇匀挤去滴再加样。加样前先将微孔板平放在板架台上，以免对洗板机的自动操作带来影响， 为了保证加样的准确性， 建议使用准确性高的微量移液器且定期进行校正。加样品稀释液、酶结合物应用液、底物应用液及终止液时可采用定量多道加液器， 迅速完成加液过程， 加样后用不干胶或胶带纸封好酶标板防止水分蒸发或杂物进入孔内， 注意封板膜不可二次利用，避免交叉污染，剩余的微孔板、不干胶或胶带纸与干燥剂一同保存在备用自封塑料袋中。大批量检测大型机构体检标本时可采用直接加入适量血清的加样模式， 经济环保提高工作效率]。
在实际操作过程中， 待检标本和酶标志物先后顺序加入， 于是在竞争法中因为两者的不同时加入而存在一个“不公平”竞争现象，研究表明，竞争法ELISA 检测受加样方法的影响存在统计学意义，将标本和酶标志物先在试管中等量混和均匀后再加入酶标板小孔杯中可降低-HBc 检测的假阳性率。
2.4 温育
温育是ELISA 至关重要的一步，不同的温育环境对检测结果有影响， 操作中应严格按照说明书控制温育时间及温度， 并注意封闭避免边缘效应。为确保各板温度都能迅速达到平衡，不可将反应板叠加放置， 设定的温度及时间严格按照说明书进行， 一般加入待测标本后使其与固相抗原(抗体)置于37℃环境下温育。因为很多恒温箱的构造，温度及检测的温度并非酶标板温育温度，所以使用恒温箱温育时建议将温度计置于酶标板旁，保证酶标板旁温度为37℃。干育和水温的影响差异较为明显，建议使用水温，注意将固相板放入水中，防止受热不均匀。温育时间是影响检测结果的一大因素。
2.5 洗板
洗板目的在于将特异性结合于固相上的抗原(抗体)与温育过程中吸附的非特异性成份分离，使免疫复合物与待测抗体(抗原)呈一定比例，洗板是否合格直接影响检测结果的准确性。洗板应严格按照说明控制洗板时间及洗板次数，ELISA 检测一般用洗涤液洗板3 次，洗涤液应严格按照操作说明进行稀释， 洗液应注满每个微孔并注意洗液不外溢，垂直甩板避免交叉污染，防止出现假阴性及假阳性结果。使用洗板机洗板可一定程度上避免环境污染、提高工作效率，洗涤开始时注意观察每根吸液针是否一直插入孔底并吸干孔内全部液体， 严格按照要求设置一定的洗板时间及洗板次数。洗板过程中注意冲力大小，避免冲力过大导致酶结合物丢失，吸光度值偏低。洗液应根据不同厂家的酶标板调整注水量， 注意不要溢出孔外； 稀释洗液所用的蒸馏水或去离子水酸碱度适中，使配出的洗液pH 在7.2~7.6 范围内，用非金属容器保存，保持液体新鲜无污染、沉淀。洗板结束后将板拍干， 应垂直扣在备好的干净的吸水纸或毛巾上，且注意每次更新干净的吸水纸或毛巾。洗板时还应注意以下问题：(1) 需每天校正注液量及残液量， 洗涤后残液量不得大于2μl；(2)及时更换破损吸液针，避免破坏底板包被；(3)针对不同厂家酶标板注意调整吸液头下降高度， 避免冲洗针头卡住酶标板；(4)注意调整洗液量，洗液量过多将溢出，过少将达不到洗涤效果；(5)关机前使用蒸馏水冲洗管道，避免洗液的结晶物堵塞管道；(6)
不同种试剂盒的洗液严禁混合使用。临床操作中， 工作人员由于担心洗板次数过少达不到去除非特异性物质的理想效果而增加洗板次数，*近研究发现，随着洗板次数的增加样本检测的OD 值降低，造成假阴性结果及灰区标本的漏检。
2.6 显色及结果判断
试剂显色时A、B 液按顺序加入且间隔不超过10min，如先将两液混合再加样则需保证等体积混合。显色剂不宜过多，注意避光反应。显色是*后一步温育反应，酶将无色底物催化反应呈有色， 反应的温度和时间均为影响结果的重要因素， 目前市场上大多数进口的ELISA 检测显色温度处于18~30℃。一定时间内，阴性孔可保持无色，但阳性孔会随时间的延长而显色加强。研究表明，显色温度对实验结果有明显影响，显色温度不同，试剂检测能力差距非常大，温度低于21℃时试剂盒对于质控物的检出能力下降，温度过低导致结合反应速率变慢[41]，显色不充分，
造成低值阳性结果的漏检， 所以操作中应严格控制温度。显色时间不宜过短，因为一些低滴度可能不能及时出现反应，造成假阴性结果。结果判断应按照说明书在规定时间内完成，研究报道终止反应后的时间对OD 值结果有明显影响，10~15min阳性结果OD 值逐渐下降，阴性结果的OD 值有所上升，所以必须严格按照操作说明进行。
在加液和混合过程中产生气泡、微孔条底部不透明、带水滴、有划痕及不规则的表面都可能引起吸光值的升高，易造成假阳性结果，若显色但酶标仪读值为阴性的灰色值样区的样本不管其是否来源于高危人群均需复检并参考参比试剂。
2.7 其它因素
实验室的环境亦是影响试验结果的一大因素， 合理控制实验室的通风、采光及防尘，实验室的温度及湿度可使用空调加以控制，湿度控制在35%~65%间，并避免噪音及电磁波干扰。

原创作者：上海恒远生物科技有限公司